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第一篇　植物生物学实验3

实验一　植物组织、器官的结构观察3

一　植物组织的结构观察3

二　被子植物营养器官的结构观察6

三　被子植物繁殖器官的结构观察10

实验二　植物理化性质的测定19

一　植物组织水势的测定（小液流法）19

二　植物呼吸强度的测定（小篮子法）20

三　叶绿素的提取及性质测定21

四　种子发芽率的快速测定23

实验三　种子植物标本的采集、制作与保存26

实验四　设计创新实验29

第二篇　动物生物学实验33

实验一　动物解剖及形态观察实验33

一　眼虫及草履虫观察34

二　蛔虫解剖及横切片观察36

三　蝗虫外形及内部解剖37

四　鲤鱼外形及内部解剖40

五　蟾蜍外形及内部解剖44

六　家鸡外形及内部解剖49

七　家兔外形及内部解剖52

实验二　动物机能实验57

一　呼吸运动调节58

二　心搏的观察、描记及期前收缩和代偿间歇60

三　坐骨神经-腓肠肌标本制备及骨胳肌收缩性质的观察61

四　蛙心室肌细胞动作电位以及心电与心肌收缩的时相关系64

五　神经干的动作电位、传导速度及兴奋性测定66

六　反射弧的分析69

七　小脑受伤动物运动功能障碍的观察70

八　大脑皮层运动机能定位71

九　血压调节72

十　去大脑僵直75

实验三　人体机能检测实验77

一　人体心音听诊79

二　人体血压和肺活量测定80

三　人体血型的鉴定83

实验四　设计创新实验85

第三篇　微生物学实验89

实验一　土壤中微生物的分离纯化、培养观察及保藏89

一　常用培养基的制备、灭菌93

二　土壤中微生物的分离纯化及培养技术103

三　细菌的形态观察109

四　细菌细胞的生理生化反应117

五　大肠杆菌生长曲线的测定120

六　放线菌、霉菌和酵母菌的形态观察121

七　微生物的测微技术126

八　微生物菌种的保藏128

实验二　厌氧菌的培养技术135

一　用厌氧袋法培养丙酮丁醇梭菌135

二　厌氧罐培养法138

三　针筒厌氧培养法140

实验三　细菌细胞数量的测定144

一　直接计数法144

二　光电比浊计数法146

三　平板菌落计数法147

四　多管发酵测定法150

五　干重比色测定法152

实验四　微生物诱变及突变株的筛选155

一　紫外线与亚硝基胍的诱变效应155

二　抗药性突变株的筛选158

三　酵母菌营养缺陷型的筛选160

实验五　昆虫病毒多角体的染色与观察165

实验六　大肠杆菌噬菌体的分离、纯化及效价测定167

实验七　动物病毒的鸡胚培养169

实验八　抗菌肽效价的生物测定172

实验九　乳酸发酵与乳酸菌饮料的制备176

实验十　响应面法优化大肠杆菌的发酵条件179

实验十一　利用微生物快速测定仪对微生物进行分类183

实验十二　细菌的药敏试验——纸片扩散法185

实验十三　柯赫法则——病原接种与致病性证实实验188

实验十四　葡萄球菌的分离与鉴定190

实验十五　设计创新实验192

第四篇　细胞生物学实验195

实验一　徒手切片、装片、涂片的制作及细胞结构的观察195

一　徒手切片的制作及植物细胞观察195

二　肠系膜装片的制备及脂肪细胞的染色观察199

三　血细胞涂片的制备及细胞形态观察201

四　活体染色及线粒体、液泡系的观察202

五　细胞内酸性蛋白质和碱性蛋白质的观察205

实验二　石蜡切片的制备及细胞的染色观察207

一　石蜡切片的制备207

二　细胞内多糖的PAS反应213

三　DNA的Feulgen反应214

四　Brachet反应——细胞内DNA、RNA的显示216

实验三　细胞器的荧光标记技术218

一　荧光显微镜观察口腔上皮细胞218

二　细胞骨架的荧光标记219

三　纺锤体的免疫荧光标记224

四　利用脂质体的转染技术对HeLq细胞中重组GFP进行观察226

实验四 电镜制片技术228

一　超薄切片的制备228

二　扫描电镜样品的制备232

实验五　免疫胶体金技术234

实验六　植物组织及细胞的培养236

一　植物愈伤组织的诱导及分化236

二　植物细胞的悬浮培养238

三　原生质体的分离、融合与培养239

实验七　动物细胞的培养244

一　贴壁细胞的传代培养244

二　小鼠胚胎细胞的原代培养245

三　细胞的融合246

四　细胞冻存与复苏248

实验八　细胞的分离与鉴定250

一　细胞器的分级分离250

二　玉米线粒体的分离与观察254

三　叶绿体分离及离体叶绿体对染料的还原作用255

实验九　细胞生理性质实验257

一　细胞膜透性观察257

二　巨噬细胞吞噬现象的观察258

实验十　细胞凋亡相关实验260

一　细胞凋亡的形态学观察261

二　凋亡细胞的碘化丙啶（PI）排斥分析法261

三　细胞群染色体DNA断裂的测定262

实验十一　利用RT-PCR技术检测HeLa细胞中β-actin的表达265

实验十二　新生大鼠心脏细胞的分离和培养268

实验十三　哺乳动物早熟染色体凝聚诱导271

实验十四　设计创新实验273

第五篇　免疫学实验277

实验一　淋巴细胞功能检测277

一　淋巴细胞的分离和计数277

二　T淋巴细胞功能检测——转化试验278

三　B淋巴细胞功能检测——溶血空斑试验279

实验二　NK细胞功能检测281

实验三　抗体的制备——多克隆抗体的制备283

一　抗原的制备和纯化283

二　动物的免疫285

三　免疫血清的分离和纯化286

四　血清抗体效价的测定286

实验四　抗体的制备——单克隆抗体的制备287

实验五　抗原抗体反应——凝集反应292

直接凝集法测血型抗体效价（示范教学）292

实验六　抗原抗体反应——沉淀反应294

一　单向免疫扩散（single immunodiffusion）294

二　双向免疫扩散（double immunodiffusion）295

三　免疫电泳（immunoelectrophoresis）296

实验七　抗原抗体反应——补体介导细胞毒实验298

实验八　免疫标记技术——ELISA（间接法）300

实验九　免疫标记——免疫组织化学技术302

实验十　免疫标记——免疫印记杂交技术304

实验十一　细胞因子检测技术307

实验十二　设计创新实验309

主要参考文献311

附录313

附录1　玻璃仪器的洗涤及各种洗涤液的配制313

附录2　培养基的常规配制程序315

附录3　微生物学实验试剂和溶液的配制319

附录4　微生物学常用染液的配制320

附录5　微生物学实验常用培养基的配制322

附录6　细胞生物学培养基剂配制方法328

附录7　细胞生物学实验试剂配制331

附录8　设计创新实验程序与要求340