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总论1

一、绪言1

(一) 生理学实验课的目的1

(二) 实验课的要求1

(三) 整理实验结果1

(四) 书写实验报告1

(五) 生理学实验室规则2

二、生理学常用刺激器材及使用方法2

(一) 刺激器2

(二) 刺激电极4

(三) 锌铜弓5

三、生理学常用记录器材及使用方法5

(一) 双导生理记录仪5

(二) 记纹鼓9

(三) 支台11

(四) 杠杆11

(五) 描笔12

(六) 墨水12

(七) 肌动器12

(八) 气鼓12

(九) 检压计13

(十) 电磁标13

(十一) 记滴器13

四、生理学实验常用手术器械的使用方法14

五、生理学实验常用溶液及配制方法16

(一) 常用盐溶液16

(二) 常用动物麻醉药物剂量和使用方法17

(三) 常用抗凝剂的配制17

六、动物实验的基本操作技术17

(一) 常用动物的捕捉方法17

(二) 常用动物的麻醉方法19

(三) 常用动物的固定方法20

(四) 常用手术的基本操作20

(五) 常用动物的给药方法23

(六) 常用的采血方法24

各论27

实验一 坐骨神经腓肠肌标本制备27

实验二 阈刺激、阈上刺激、最大刺激29

实验三 肌肉的单收缩、复合收缩和强直收缩30

实验四 负荷对肌肉收缩的影响32

实验五 神经干动作电位测定34

实验六 神经兴奋传导速度的测定36

实验七 神经纤维兴奋不应期的测定37

实验八 肌电图描记39

实验九 神经的强度-时间曲线和时值的测定41

实验十 血细胞计数42

实验十一 血细胞比容的测定44

实验十二 血红蛋白量的测定44

实验十三 红细胞渗透性试验45

实验十四 红细胞沉降率试验47

实验十五 血液凝固47

实验十六 出血时测定49

实验十七 凝血时测定50

实验十八 血型测定50

实验十九 蟾蜍心脏起搏点的分析51

实验二十 期前收缩与代偿间歇53

实验二十一 影响心脏活动的体液因素54

实验二十二 心音听诊56

实验二十三 人体动脉血压的测定57

实验二十四 蛙心容积导体实验58

实验二十五 心电向量测定59

实验二十六 人体表心电图的描记61

实验二十七 人体无创伤心功能测定64

实验二十八 人体动脉脉搏描记67

实验二十九 兔动脉血压的调节68

实验三十 兔减压神经放电70

实验三十一 蟾蜍在体心肌动作电位描记71

实验三十二 蟾蜍舌的微循环观察73

实验三十三 人体肺容量和肺通气量的测定74

实验三十四 兔呼吸运动的调节与胸膜腔内压的观察77

实验三十五 兔膈神经放电81

实验三十六 消化道平滑肌生理特性83

实验三十七 兔胃运动的观察84

实验三十八 小白鼠能量代谢的测定86

实验三十九 影响尿生成的因素88

实验四十 动物肾上腺摘除后的观察90

实验四十一 反射弧的分析91

实验四十二 脊髓反射92

实验四十三 破坏小脑动物的观察94

实验四十四 兔大脑皮层运动区功能定位95

实验四十五 去大脑僵直96

实验四十六 人体脑电图的描记97

实验四十七 大脑皮层诱发电位98

实验四十八 人视觉功能测定101

实验四十九 人体视网膜电图的描记101

实验五十 视野测定103

实验五十一 瞳孔的调节反射和对光反射104

实验五十二 声音传导的途径105

实验五十三 微音器效应105

实验五十四 破坏动物一侧迷路的效应107